Исследование на микрофлору мокроты: Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам, микроскопией нативного мазка

Содержание

Посев мокроты на микрофлору и определение чувствительности к бактериофагам

Исследование мокроты направлено на выделение возбудителя заболевания и на определение количественных значений обнаруженных бактерий.
При бактериологических исследованиях мокроты оценивается общая картина микрофлоры. Идентифицируются грамположительные кокки — Staphylococcus spp., Micrococcus spp., Streptococcus spp; ланцетовидные грамположительные диплококки — Str.pneumoniae, грамотрицательные диплококки — Neisseria spp; грамотрицательные палочки — Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., Haemophilus spp., Klebsiella spp., Haemophilus spp. и др.

Предпочтительно исследование утренней порции мокроты. Перед сбором мокроты необходимо почистить зубы, десны, язык, слизистую оболочку щек зубной щеткой и тщательно прополоскать рот кипяченой водой.

Методика взятия: сделать 2 глубоких вдоха-выдоха, задержать дыхание на несколько секунд после каждого вдоха.

Вдохнуть третий раз и с силой выдохнуть воздух. Вдохнуть еще раз и затем покашлять. Это способствует получению мокроты из глубоких отделов легких. После появления продуктивного кашля поднести к губам стерильный контейнер и аккуратно сплюнуть в него мокроту. Избегать попадания слюны и носовой слизи в образец. Минимально достаточный объем исследуемой порции мокроты составляет 3-5 мл.
Хранение и доставке в лабораторию в течение 4 часов при +4 — +8°С.

Исследование обычно проводится при воспалительных заболеваниях нижних отделов дыхательных путей, сопровождающихся отделением мокроты. Особую важность исследование имеет при абсцессе легкого, гангрене легкого, бронхоэктатической болезни, эмпиеме плевры.

Бактериофаги — это вирусы избирательно поражающие бактериальные клетки.
Бактериофаги используются для антибактериальной терапии в качестве альтернативы приему антибиотиков. Обычно используются для лечения бактериальных инфекций, возбудители

Основной целью определения чувствительности микроорганизмов к АБП является прогнозирование их эффективности при лечении инфекций у конкретных пациентов. Определение чувствительности также проводят при наблюдении за распространением резистентности среди микроорганизмов.
Определение чувствительности к АБП проводится при выявлении этиологически значимых микроорганизмов в количестве 103 и более КОЕ/мл.
Основой для выбора АБП, подлежащих включению в исследование, являются данные о природной чувствительности обнаруженных микроорганизмов или их групп, о распространении среди них приобретенной резистентности, а также клинической эффективности АБП.
При необходимости подбора бактериофагов используется 2-3 различных антибактериальных препарата.

Посев на микрофлору и чувствительность к антибиотикам мокроты 

ОписаниеПодготовкаПоказанияИнтерпретация результатов

Мокрота – это отделяемое из бронхов, по сути дела являющейся слизью, которую в избыточном количестве продуцируют клетки эпителия бронхов в качестве защитной реакции на воспаление.

Посев мокроты на микрофлору необходим при ряде острых и хронических заболеваний. В комплексном обследовании подразумевается, что помимо выполнения посева мокроты на микрофлору, необходим и посев мокроты на чувствительность к антибиотикам.

В основном, посев мокроты на микрофлору и посев мокроты на чувствительность к антибиотикам выполняется как один анализ в ходе одного исследования.

Мокрота может содержать различные микроорганизмы, которые являются в данном конкретном случае возбудителями инфекционного процесса. Диагноз без посева мокроты на микрофлору не может быть правомочным, а назначение антибактериальной терапии должно проводиться с учетом результата посева мокроты на чувствительность к антибиотикам.

Посев мокроты на микрофлору и посев мокроты на чувствительность к антибиотикам необходим при нал       ичии острого процесса в бронхах и легких, для индентификации возбудителя и своевременного начала лечения. Также, посев мокроты на микрофлору необходим пациентам с хронической патологией (хроническая обструктивная болезнь легких, муковисцидоз, бронхоэктатическая болезнь, бронхомаляция, пороки развития бронхов и т. д.) для быстрого распознавания присоединения инфекции и развития обострения.

Посев мокроты используется в дифференциальной диагностике пневмонии, так как при каждом возбудителе тактика различна, к тому же, посев мокроты на чувствительность к антибиотикам позволяет врачу выбрать наиболее подходящее лечение исходя из полученных данных.

Посев мокроты на микрофлору и посев мокроты на чувствительность к антибиотикам необходимо проводить до начала антибактериальной терапии и иммуномодуляторов, иначе возможны ложноотрицательные результаты.

Во время исследования необходимо получить утреннюю порцию мокроты, отходящую во время кашля. Перед тем, как получить образец мокроты, необходимо почистить зубы, прополоскать рот, чтобы механически убрать остатки пищи и микроорганизмы, находящиеся в ротовой полости (их наличие может привести к неправильным результатам посева).

При сборе мокроты необходимо постараться, чтобы в контейнер не попадала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке).

При плохом отхождении мокроты, рекомендуется выпить достаточное количество жидкости, чтобы несколько увеличить объем отделяемого.

В ходе исследования, врач-лаборант выдает заключение, которое содержит информацию о наличии или отсутствии роста микроорганизмов, идентификации возбудителя, спектре антибактериальных препаратов к которым есть чувствительность и к которым данный микроорганизм устойчив.

Посев на флору с определением чувствительности к основному спектру антибиотиков и бактериофагам,в т.ч.кандида

Выберите требуемый вид биоматериала

Сбор грудного молока желательно проводить до кормления ребенка или через два часа после кормления грудью. Грудное молоко собирается после тщательного мытья рук и молочных желез с обработкой околососкового пространства и кончиков пальцев спиртом. Первые 0,5 мл молока необходимо слить, следующие 5 мл молока из железы сцедить в стерильный пластиковый контейнер без ложки. При необходимости микробиологического исследования молока обеих молочных желез, сбор грудного молока из каждой железы производится в отдельный контейнер. Обращаем Ваше внимание, что 2 контейнера — это два исследования, каждое из которых оплачивается отдельно.

Сбор грудного молока желательно проводить до кормления ребенка или через два часа после кормления грудью. Грудное молоко собирается после тщательного мытья рук и молочных желез с обработкой околососкового пространства и кончиков пальцев спиртом. Первые 0,5 мл молока необходимо слить, следующие 5 мл молока из железы сцедить в стерильный пластиковый контейнер без ложки. При необходимости микробиологического исследования молока обеих молочных желез, сбор грудного молока из каждой железы производится в отдельный контейнер. Обращаем Ваше внимание, что 2 контейнера — это два исследования, каждое из которых оплачивается отдельно.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Мокроту можно собрать только при наличии кашля! Перед сбором мокроты рекомендуется почистить зубы (не использовать зубную пасту с антибактериальными компонентами) и прополоскать рот кипяченой водой. Избегать попадания в мокроту слюны и носовой слизи. Мокрота по мере откашливания собирается в стерильный контейнер. Кашель можно вызвать с помощью нескольких глубоких вдохов.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Бактериологическое исследование мокроты на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы с идентификацией

Код услуги

77010420

Описание

Мокрота, отделяемое нижних дыхательных путей.
Цель исследования.обнаружение в мокроте аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов: энтеробактерий (клебсиеллы, энтеробактер., цитробактер и др.) стафилококков, стрептококков, гемофильной палочки, синегнойной палочки , неферментирующей флоры (ацинетобактер. псевдомонады, моракселлы и др), грибов рода Кандида, с определением их вида и определение чувствительности к антибиотикам и антимикотикам. Исследуемый материал.мокрота. Показания к исследованю.  Бронхо — легочные инфекции, пневмонии. бронхиты . Диагностическое значение. В норме мокрота  человека, как правило, контаминирована представителями нормальной  микрофлорой  верхних дыхательных путей: Streptococcus gr. viridans, Corynebacterium spp. (кроме C. diphtheriae), Neisseria spp. (кроме  N. meningitides), Staphylococcus spp. Патогенами высокого уровня приоритетности являются: Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae. Патогены среднего уровня: энтеробактерии, кандиды.  Обнаружение микроорганизмов в концентрации 10 в 5 и выше является диагностически значимым, для Кандид — 10 в 3 и выше.
Подготовка к исследованию. Забор материала необходимо производить до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения. После полоскания полости рта кипяченой водой свободно откашливают мокроту (лучше первую утреннюю порцию, до еды) собирают в стерильный контейнер с завинчивающейся крышкой. Результат  через 5 рабочих дней. Результат бактериологического исследования не является диагнозом. Диагноз ставит только лечащий врач  на основании совокупности результатов различных исследований, общего состояния пациента, клинической картины.

Подготовка

Мокроту собирают утром натощак после туалета полости рта (чистка зубов, полоскание полости рта кипяченой водой) во время приступа кашля в специальный стерильный контейнер. Доставка в течение 2 часов, кроме воскресенья.

Посев мокроты на флору с определением чувствительности

Цены: от 485р. до 2700р.

Динамика цен

70 адресов, 70 цен, средняя цена 875р.

Клиника Благодатная на проспекте Юрия Гагарина

пр-т Юрия Гагарина, д. 1

пр-т Юрия Гагарина, д. 1

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

750 р.
ИнтраМед на Савушкина

ул. Савушкина, д. 143, корп. 1

ул. Савушкина, д. 143, корп. 1

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

920 р.
Первая Невская клиника на Есенина

ул. Есенина, д. 1, корп. 1

ул. Есенина, д. 1, корп. 1

Посев на флору с определением чувствительности к антибиотикам

850 р.
CapitalMed на Полтавской

ул. Полтавская, д. 7

ул. Полтавская, д. 7

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

1000 р.
MedSwiss на Московском проспекте

Московский пр-т, д. 119А

Московский пр-т, д. 119А

Посев на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам (раневое содержимое, мокрота, экссудаты)

710 р.
Клиника имени Петра Великого

Пискаревский пр-т, д. 47

Пискаревский пр-т, д. 47

Посев мокроты на флору с определением чувствительности

575 р.
Американская медицинская клиника

наб. реки Мойки, д. 78

наб. реки Мойки, д. 78

Посев мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам

1870 р.
Клиника Звездная на Московском шоссе

Московское шоссе, д.

Московское шоссе, д. 5А

Посев мокроты и трахеобронхиальных смывов на микрофлору, определение чувствительности к антимикробным препаратам и микроскопией мазка (Sputum and Tracheobronchial washings Culture. Bacteria Identification and Antibiotic Susceptibility Testing, Microscopy) *

1030 р.
Северо-Западный медицинский центр на Савушкина

ул. Савушкина, д. 124, корп. 1

ул. Савушкина, д. 124, корп. 1

Посев мокроты на флору с определением чувствительности

890 р.
Аврора на Крыленко

ул. Крыленко, д. 43, корп. 2А

ул. Крыленко, д. 43, корп. 2А

Посев на условно-патогенную микрофлору: мокрота

1500 р.
Клиника им. Э.Э.Эйхвальда

ул. Кирочная, д. 41

ул. Кирочная, д. 41

Посев мокроты на флору с определением чувствительности

575 р.
Северо-Западный медицинский центр на Кронверкском проспекте

пр-т Кронверкский, д. 31

пр-т Кронверкский, д. 31

Посев мокроты на флору с определением чувствительности

890 р.
МЦ Доктор на проспекте Энтузиастов

пр-т Энтузиастов, д. 43, корп. 1

пр-т Энтузиастов, д. 43, корп. 1

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

1190 р.
ОрКли на Среднем проспекте В. О.

Средний пр-т В.О., д. 48/27

Средний пр-т В.О., д. 48/27

Посев мокроты на флору с определением чувствительности к антибиотикам

1600 р.
МЦ Время на Большом Сампсониевском проспекте

Б. Сампсониевский пр-т, д. 60А

Б. Сампсониевский пр-т, д. 60А

Посевнамикрофлору с определением чувствительности к антибиотикам (раневое содержимое, мокрота, экссудаты)

835 р.
МедЛаб на Караваевской

ул. Караваевская, д. 26

ул. Караваевская, д. 26

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
Рута на Фермском шоссе

Фермское шоссе, д. 20, корп. 2

Фермское шоссе, д. 20, корп. 2

Бактериологическое исследование клинического материала с определением антибиотикочувствительности методом DDM для этиологически значимых микроорганизмов

890 р.
Доминанта на наб. реки Фонтанки

наб. реки Фонтанки, д. 116 лит. А

наб. реки Фонтанки, д. 116 лит. А

Бактериологическое исследование клинического материала: грудное молоко, мокрота с последующим определением чувствительности к расширенному спектру антибиотиков. Посев грудного молока, мокроты

1000 р.
МедЛаб на проспекте Славы

пр-т Славы, д. 55

пр-т Славы, д. 55

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МедЛаб на Петергофском шоссе

Петергофское шоссе, д. 45

Петергофское шоссе, д. 45

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МедЛаб на проспекте Энгельса

пр-т Энгельса, д. 126, корп. 1

пр-т Энгельса, д. 126, корп. 1

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МедЛаб на проспекте Обуховской Обороны

пр-т Обуховской Обороны, д. 71

пр-т Обуховской Обороны, д. 71

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МК-Мед на Ланском шоссе

Ланское шоссе, д. 14, корп. 1

Ланское шоссе, д. 14, корп. 1

Посев на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам (раневое содержимое, мокрота, экссудаты)

738 р.
Клиника Веда в Шушарах

пос. Шушары, ул. Первомайская, д. 26

пос. Шушары, ул. Первомайская, д. 26

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

1300 р.
МЦ Запад-Восток на Шкиперской протоке

Шкиперский проток, д. 20

Шкиперский проток, д. 20

Исследование мокроты на флору и чувствительность к антибиотикам

1050 р.
МедЛаб на Фрунзе

ул. Фрунзе, д. 1

ул. Фрунзе, д. 1

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МедЛаб на Фермском шоссе

Фермское шоссе, д. 32

Фермское шоссе, д. 32

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
МедЛаб на Некрасова

ул. Некрасова, д. 11

ул. Некрасова, д. 11

БП15 Посев мокроты на микрофлору с определением чувствительности к антибиотикам и антимикотическим препаратам с предварительной микроскопией

950 р.
Витамед на Есенина

ул. Есенина, д. 38, корп. 1

ул. Есенина, д. 38, корп. 1

Бактериологическое исследование материала на микрофлору с определением чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам

650 р.
ИнтеграМед на проспекте Энтузиастов

пр-т Энтузиастов, д. 33, корп. 1А

пр-т Энтузиастов, д. 33, корп. 1А

Посев на флору с определением чувствительности к антибиотикам

680 р.

Посев мокроты — Клиника Здоровье 365 г. Екатеринбург

Посев, или бактериологический анализ — один из самых распространенных методов выделения культуры бактерий на питательной среде в условиях лаборатории. «Выращивание» такого посева приводит к бурному размножению микроорганизмов и облегчает выявление возбудителя инфекции. На посев может быть отправлен любой биологический материал. Бактериологическое исследование имеет целью не только выяснение характера микрофлоры, но и ее количество, а так же определение их чувствительности к различным группам антибиотиков. Обычно этой информации бывает достаточно, чтобы начать самое сложное лечение и предупредить переход острого процесса в хронический.

Посевы мокроты производятся при гнойно-воспалительных заболеваниях дыхательных путей (бронхит, пневмония, абсцесс легкого, бронхоэктатическая болезнь). Мокроту для бактериологического исследования рекомендуется собирать с утра, натощак после санации ротовой полости, в стерильный пластиковый контейнер (контейнер можно получить в регистратуре). Чтобы избежать загрязнения собираемой мокроты нормальной бактериальной флорой, присутствующей во рту и горле, и с целью механического удаления остатков пищи и слущенного эпителия больной перед откашливанием чистит зубы, полощет рот и горло кипяченой водой. Утреннюю мокроту, выделяющуюся во время приступа кашля, собирают в стерильную емкость с широким горлом и плотно прилегающей крышкой. При плохо отделяемой мокроте, рекомендуется накануне назначить отхаркивающее средство. Если в данный момент пациент не может выделить мокроты, он не должен прилагать усилия для отхаркивания. Исследование проводят до начала приема антибиотиков. Доставка материала в лабораторию по возможности осуществляется без промедления, так как хранение материала способствует размножению флоры, развитию процессов гниения и брожения, гибели стрептококков и пневмококков. Мокрота может храниться течение 2 ч при комнатной температуре, 5-6 часов при температуре 2-8°С. К возбудителям, выявляемым в данном анализе, относятся: этиологически значимые — H. influenzae, S. pneumoniae и M. catarrhalis, грамотрицательные бактерии семейства Enterobacteriaceae, P. aeruginosa, S. aureus, S. pyogenes, Acinetobacter sp., грибы рода Candida. Мокрота, проходя через верхние дыхательные пути и полость рта, может контаминироваться вегетирующей в них микрофлорой, это могут быть зеленящие стрептококки (S. viridans group), стафилококки (S.еpidermidis), непатогенные нейссерии (Neisseria sp.), непатогенные дифтероиды (Corynebacterium sp.), Lactobacillus sp., Candida sp. и некоторые другие.

В выдаваемом результате, указывается преобладающая микрофлора, количество патогенных микроорганизмов и чувствительность к различным группам антибиотиков.

Бакпосев мокроты, из бронхов + антибиотикограмма

Общая характеристика

Исследование используется для диагностики этиологического агента при инфекциях нижних дыхательных путей. Из-за того, что мокрота часто загрязнена нормальной ротоглоточной флорой, присутствие истинного возбудителя трудно определить. После идентификации этиологического агента определяется его чувствительность к антибиотикам. Выделяемые микроорганизмы: Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus, Streptococcus spp., Коагулазонегативные стафилококки, Enterobacteriaceae, Pseudomonas aeruginosa, Haemophilus influenzae, Moraxella catarrhalis, Candida spp. , Corynebacterium spp., Neisseria spp.

Показания для назначения

Гнойно-воспалительные заболевания дыхательных путей (бронхит, пневмония, абсцесс лёгкого, эмпиема плевры, бронхоэктатическая болезнь).

Маркер

Оценка наличия возбудителей инфекции в исследуемом биоматериале с определением чуствительности к антибиотикам.

Клиническая значимость

1.Установление факта инфекционного процесса.
2.Выбор адекватной антибиотикотерапии.
3.Мониторинг лечения


Состав показателей:

Бактериологический посев + а/биотикограмма мокроты, из бронхов
Метод: Микробиологический
Диапазон измерений: 0-0
Единица измерения: Колониеобразующих единиц на грамм

Референтные значения:

Возраст

Комментарии

Выполнение возможно на биоматериалах:

Биологический материал

Условия доставки

Контейнер

Объем

мокрота

Условия доставки:

6 час. при температуре от 4 до 8 градусов Цельсия

Контейнер:

Стерильный контейнер с крышкой

Объем:

50 Миллилитров

смыв из бронхов (Бронхо-альвеолярный лаваж)

Условия доставки:

6 час. при температуре от 4 до 8 градусов Цельсия

Контейнер:

Стерильный контейнер с крышкой

Объем:

50 Миллилитров

Правила подготовки пациента

Стандартные условия подготовки (если иное не определено врачом): За 24 часа Прекратить прием местных антибактериальных и антисептических препаратов.

Примечания: Перед сбором мокроты почистить зубы, прополоскать ротоглотку кипяченой водой, сплюнуть слюну. Утреннюю порцию мокроты выделенную при откашливании собрать в стерильный контейнер из набора, после чего по инструкции смочить стерильный тампон Амис женский в БМ 10-15 сек и поместить его в пробирку со средой Амис женскую. Важно достичь максимальной пропитки тампона путем его контакта с БМ 10-15 сек. Транспортировать в пробирке со средой Амис в лабораторию в течение 72 часов при температуре 20-25 °С.

Вы можете добавить данное исследование в корзину на этой странице

Интерференция:

  • Приём антимикробных препаратов оказывает влияние на достоверность результата.

Интерпретация:

  • Патогены высокого уровня приоритетности: Streptococcus pneumoniае; Haemophilus influenza; Staphylococcus aureus; Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa.Патогены среднего уровня приоритетности: Энтеробактерии; Candida albicans; Branhamella catarrhalis.Патогены низкого уровня приоритетности (все другие микроорганизмы): Legionella pneumophila, Mycoplasma pneumoniae.I степень роста (очень скудный рост) – единичные колонии до 10(105 КОЕ/мл).I и II степени роста свидетельствуют в пользу загрязнения или носительства, а III и IV — в пользу этиологической значимости данного микроорганизма.

Посев мокроты | HealthLink BC

Обзор теста

Мокрота — это густая жидкость, вырабатываемая в легких и в дыхательных путях, ведущих к легким. Посев мокроты — это тест для поиска микробов (например, бактерий или грибков), которые могут вызвать инфекцию. Образец мокроты добавляется к веществу, способствующему росту микробов. Если микробы не растут, посев отрицательный. Если микробы, которые могут вызвать инфекцию, разрастаются, посев положительный. Тип микроба можно определить с помощью микроскопа или химических тестов.Иногда проводятся другие анализы, чтобы подобрать правильное лекарство от инфекции. Это называется проверкой чувствительности.

Вас могут попросить кашлять, чтобы сдать образец мокроты. Некоторые люди не могут кашлять достаточно глубоко, чтобы произвести анализ. Они могут вдыхать специальный туман, который помогает им откашляться.

Зачем это нужно

Посев мокроты проводится для:

  • поиска бактерий или грибков, вызывающих инфекцию легких или дыхательных путей, ведущих к легким. Примеры включают пневмонию и туберкулез. Симптомы легочной инфекции могут включать затрудненное дыхание, боль при дыхании или кашель с выделением кровянистой или зеленовато-коричневой мокроты.
  • Найдите лучший антибиотик для лечения инфекции. (Это называется проверкой чувствительности.)
  • Посмотрите, работает ли лечение.

Как подготовить

Не используйте жидкость для полоскания рта до сбора образца мокроты. Некоторые виды жидкостей для полоскания рта убивают бактерии и могут повлиять на ваши результаты.

Если для сбора образца мокроты будет использоваться бронхоскопия, ваш врач скажет вам, как скоро до обследования прекратить есть и пить. Точно следуйте инструкциям о том, когда прекратить есть и пить. Если вы этого не сделаете, ваша операция может быть отменена. Если врач сказал вам принимать лекарства в день операции, запивайте их только глотком воды.

Сообщите своему врачу, если вы недавно принимали антибиотики.

Как это делается

В большинстве случаев образец мокроты собирается рано утром, прежде чем вы что-нибудь съедите или выпьете.В некоторых случаях могут потребоваться три или более утренних пробы. (Это часто делают, если у вас может быть туберкулез.)

Если вы носите зубные протезы, вам нужно будет вынуть их, прежде чем собирать образец мокроты. Затем прополощите рот водой. Затем сделайте глубокий вдох и глубоко откашляйтесь, чтобы взять образец мокроты. Человек, берущий образец, может постучать вам по груди. Это постукивание помогает разжижить мокроту в легких перед кашлем. Если у вас по-прежнему возникают проблемы с откашливанием образца, вас могут попросить вдохнуть аэрозольный туман, чтобы облегчить кашель.

Бронхоскопия

Некоторым людям может потребоваться бронхоскопия для сбора образца мокроты. Тонкая трубка с подсветкой (бронхоскоп) вводится через рот или нос в дыхательные пути, ведущие к легким. Вы получите лекарство, которое вызывает онемение горла и носа, чтобы вы не чувствовали боли от бронхоскопа. Вы также можете получить успокаивающее средство, чтобы вызвать сонливость во время теста. Для сбора пробы солевой раствор можно промыть в дыхательные пути, а затем отсосать в контейнер. Для взятия образца можно использовать небольшую тонкую щетку.

Отсасывание

Отсасывание также можно использовать для сбора образца мокроты. Мягкая гибкая трубка (называемая назотрахеальным катетером) вводится через нос в горло. Для сбора пробы применяется отсасывание на срок до 15 секунд. Этот метод часто используется для людей, которые очень больны или без сознания.

После сбора образца

Образец мокроты помещается в контейнер с питательной средой или питательной средой. Это вещества, способствующие росту бактерий или грибков.Бактериям обычно требуется 2–3 дня для роста. Для роста грибка часто требуется неделя или больше. Для роста организма, вызывающего туберкулез, может потребоваться 6 недель. Любые бактерии или грибки, которые растут, будут обнаружены под микроскопом или с помощью химических тестов. Чтобы найти лучший антибиотик, тестирование чувствительности часто занимает еще 1-2 дня.

Как это себя чувствует

Если вы испытываете некоторую боль при глубоком вдохе или кашле, сдать образец мокроты может быть неудобно. Если вам нужно вдохнуть аэрозольный туман для получения образца, вы, вероятно, почувствуете сильное желание кашлять.

Во время бронхоскопии или сбора образца мокроты с помощью катетера вы можете почувствовать сильное желание кашлять. Это может произойти, когда бронхоскоп или катетер попадают в заднюю часть горла. Вы также можете почувствовать, что не можете дышать. Попытаться расслабиться. Дышите медленно.

Если вам дают лекарство от онемения горла и носа, вы можете почувствовать, как будто у вас опухли язык и горло. Вам может быть трудно глотать.

Риски

Ваше горло может болеть после бронхоскопии или сбора образца мокроты с помощью назотрахеального катетера.

Если у вас тяжелая форма астмы или бронхита, вам может быть трудно дышать во время сбора образца мокроты с помощью назотрахеального катетера.

Результаты

Посев мокроты — это тест для обнаружения бактерий или грибков, поражающих легкие или дыхательные пути. Некоторые виды бактерий или грибов быстро растут в культуре, а некоторые — медленно. Результаты анализов могут занять от 1 дня до нескольких недель. Сколько времени займет получение результатов, зависит от типа инфекции, которое, по мнению врача, у вас может быть.Некоторые организмы не растут в стандартной культуре и нуждаются в специальной питательной среде, которую можно найти в культуре мокроты. (Примеры: Chlamydophila pneumoniae и микоплазма.)

Посев мокроты

Нормальный:

Мокрота, прошедшая через рот, обычно содержит несколько типов безвредных бактерий. К ним относятся некоторые виды стрептококка ( Streptococcus ) и стафилококка ( Staphylococcus ).В культуре не должно быть никаких вредных бактерий или грибков. Нормальные результаты посева отрицательны.

Ненормальное:

Присутствуют вредные бактерии или грибки. Наиболее распространенными вредными бактериями в посеве мокроты являются те, которые могут вызывать бронхит, пневмонию или туберкулез. Если растут вредные бактерии или грибки, посев положительный.

Если результаты теста указывают на инфекцию, можно провести тестирование чувствительности.Это тестирование помогает найти лучший антибиотик для уничтожения бактерий или грибков.

Даже если в вашей культуре не растут бактерии или грибки, у вас все равно может быть инфекция.

Что влияет на тест

Возможно, вы не сможете пройти тест или результаты могут оказаться бесполезными, если:

  • Вы недавно принимали антибиотики. Они могут предотвратить рост бактерий или грибков в культуре.
  • Образец мокроты загрязнен.
  • Недостаточно образца мокроты.
  • Вы слишком долго ждете, чтобы отнести образец в лабораторию.
  • Вы используете жидкость для полоскания рта перед сбором мокроты.

Что думать

  • Бактерии или грибки можно обнаружить, нанеся на образец мокроты специальные красители. Это называется окраской по Граму. Окраска по Граму может помочь врачу:
    • Узнайте, подходит ли образец мокроты для посева. Например, правильно ли была собрана мокрота? Достаточно ли мокроты в пробе? Содержит ли он другие бактерии, не заражающие легкие? Если образец не подходит для культивирования, можно получить другой образец.
    • Поставьте диагноз до получения результатов посева из лаборатории. В некоторых случаях результаты окрашивания по Граму можно получить в течение 30 минут. Но другие результаты посева могут быть недоступны в течение от 1 до нескольких дней. Информация, полученная при окрашивании по Граму, может помочь вашему врачу быстрее вылечить инфекцию, не дожидаясь результатов посева.
  • Мокрота, полученная при кашле, чаще всего содержит бактерии изо рта. Таким образом, врач рассмотрит ваши симптомы, состояние и другие результаты анализов (например, рентген грудной клетки) вместе с результатами посева.
  • Тест на чувствительность помогает врачу выбрать лучшее лекарство для уничтожения определенных типов бактерий или грибков, заражающих человека. Различия в генетическом материале (ДНК) бактерий или грибов могут сделать их устойчивыми к определенным антибиотикам. В таких случаях эти антибиотики не могут убить все бактерии. Когда выбран антибиотик, вы должны принять все лекарство, чтобы снизить вероятность того, что бактерии станут устойчивыми к антибиотику. Раннее прекращение лечения антибиотиками убивает только самые слабые бактерии.Тогда более сильные и устойчивые могут размножиться и продлить инфекцию. Более поздние инфекции также может быть труднее лечить, если они вызваны устойчивыми бактериями.
  • Бронхоскопия часто проводится при наличии серьезной или повторяющейся инфекции легких. Это особенно верно, когда другие тесты точно не обнаружили причину. Чтобы узнать больше, смотрите тему Бронхоскопия.

Список литературы

Консультации по другим работам

  • Chernecky CC, Berger BJ (2008).Лабораторные исследования и диагностические процедуры, 5-е изд. Сент-Луис: Сондерс.
  • Fischbach FT, Dunning MB III, ред. (2009). Руководство по лабораторным и диагностическим исследованиям, 8-е изд. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс.
  • Pagana KD, Pagana TJ (2010). Руководство Мосби по диагностическим и лабораторным исследованиям, 4-е изд. Сент-Луис: Мосби.

Кредиты

Текущий по состоянию на: 23 сентября 2020 г.

Автор: Healthwise Staff
Медицинский обзор:
Адам Хусни, доктор медицины, семейная медицина,
E.Грегори Томпсон, врач-терапевт,
, Кэтлин Ромито, доктор медицины, семейная медицина,
. Дэвид Колби, IV, Магистр, доктор медицинских наук, FRCPC, инфекционное заболевание,

По состоянию на: 23 сентября 2020 г.

Автор: Healthwise Staff

Медицинский обзор: Адам Хусни, доктор медицины, семейная медицина, и Э. Грегори Томпсон, доктор медицины, терапевт, Кэтлин Ромито, доктор медицины, семейная медицина, и доктор медицинских наук В. Дэвид Колби, IV, MD, FRCPC — Инфекционное заболевание

Окраска по Граму мокроты

Определение

Окраска по Граму мокроты — это лабораторный тест, используемый для обнаружения бактерий в образце мокроты.Мокрота — это материал, который выходит из дыхательных путей при очень глубоком кашле.

Метод окраски по Граму — один из наиболее часто используемых методов для быстрого определения причины бактериальной инфекции, включая пневмонию.

Альтернативные названия

Окраска мокроты по Граму

Как проводится тест

Требуется образец мокроты.

  • Вас попросят глубоко кашлять и сплюнуть любое вещество, которое выходит из легких (мокрота), в специальный контейнер.
  • Вас могут попросить вдохнуть туман соленого пара. Это вызывает более глубокий кашель и выделение мокроты.
  • Если у вас по-прежнему недостаточно мокроты, вам может быть назначена процедура, называемая бронхоскопией.
  • Для повышения точности этот тест иногда проводят 3 раза, часто 3 дня подряд.

Образец отправлен в лабораторию. Сотрудник лаборатории помещает очень тонкий слой образца на предметное стекло. Это называется мазком. На образец наносятся пятна.Сотрудник лаборатории смотрит на окрашенное предметное стекло под микроскопом, проверяя наличие бактерий и лейкоцитов. Цвет, размер и форма клеток помогают идентифицировать бактерии.

Как подготовиться к тесту

Питьевая вода накануне теста способствует выделению мокроты из легких. Это делает тест более точным, если его проводить утром.

Если вам предстоит бронхоскопия, следуйте инструкциям врача о том, как подготовиться к процедуре.

Как будет выглядеть тест

Нет никакого дискомфорта, если только не требуется проведение бронхоскопии.

Почему проводится тест

Ваш лечащий врач может назначить этот тест, если у вас постоянный или продолжительный кашель, или если вы откашливаете материал с неприятным запахом или необычным цветом. Тест также можно сделать, если у вас есть другие признаки и симптомы респираторного заболевания или инфекции.

Нормальные результаты

Нормальный результат означает, что в образце не было обнаружено почти никакого количества лейкоцитов и бактерий.Мокрота прозрачная, жидкая, без запаха.

Что означают аномальные результаты

Аномальный результат означает, что в исследуемом образце видны бактерии. У вас может быть бактериальная инфекция. Для подтверждения диагноза необходим посев.

Риски

Рисков нет, если не проводится бронхоскопия.

Список литературы

Бивис К.Г., Чарно-Кацикас А. Сбор и обработка образцов для диагностики инфекционных заболеваний. В: Макферсон Р.А., Пинкус М.Р., ред. Клиническая диагностика и лечение Генри с помощью лабораторных методов . 23-е изд. Сент-Луис, Миссури: Эльзевьер; 2017: глава 64.

Торрес А., Менендес Р., Вундеринк Р.Г. Бактериальная пневмония и абсцесс легкого. В: Broaddus VC, Mason RJ, Ernst JD и др., Ред. Учебник респираторной медицины Мюррея и Наделя . 6-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Эльзевьер Сондерс; 2016: глава 33.

Анализ мокроты — StatPearls — Книжная полка NCBI

Введение

Слизь — это жидкость, выделяемая дыхательными путями (также известными как бронхи и дыхательные пути) и легкими.В контексте инфекции или длительного состояния здоровья также используется термин мокрота. Смесь слюны и слизи, выделившаяся из дыхательных путей, часто после инфекции или раздражения слизистой оболочки, точно обозначается как «мокрота». Термин «мокрота» происходит от греческого слова «ϕλ? Γμ?». который в древних книгах по медицине использовался для обозначения юмора, вызванного жарой.

Мокрота исследуется крупным и микроскопическим способом для облегчения постановки диагноза.Мокрота содержит различные клетки и молекулярные соединения, такие как растворимые липиды и белки. Его анализ имеет решающее значение в медицине. Анализ мокроты включает аналитический подход к исследованию клеточных и бесклеточных компонентов, выделяемых из верхних дыхательных путей пациента. Эта процедура важна для оценки и лечения инфекций нижних дыхательных путей или других хронических заболеваний. [1] С клинической точки зрения молекулярные биомаркеры мокроты или секвенирование генов микроорганизмов повысили точность медицины и представляют собой веху в текущих оценках алгоритмов, используемых для точной медицины.

Требования к образцам и процедура

Процедура сбора образцов мокроты обычно неинвазивна. В медицине это сравнительно просто. Однако в некоторых клинических условиях подход может быть более энергичным из-за неспособности пациента изгнать такую ​​жидкость из верхних дыхательных путей. Таким образом, некоторые приемы физиотерапии можно считать вспомогательными для получения материала для анализа. Обычно образец «глубокого кашля» раннего утра собирают перед едой или питьем, чтобы избежать предвзятости при интерпретации результатов.Сначала пациенту необходимо полоскать рот чистой водой в течение 10-15 секунд, чтобы удалить любые загрязнения в полости рта. После изгнания слюны пациенты затем делают три глубоких вдоха и кашляют с 2-минутными интервалами, пока не выведется немного мокроты. Затем мокрота выделяется в стерильный, хорошо закрытый контейнер, который медицинские работники предоставляют пациенту.

Медицинские работники проверят количество и общий вид мокроты, которая должна быть густой, чтобы медицинский персонал лаборатории мог провести надлежащее исследование.В некоторых учреждениях прозрачные и жидкие образцы неприемлемы для дальнейших микроскопических или микробиологических исследований. В некоторых случаях процедуру можно повторять до тех пор, пока не будет собрано от 10 до 20 мл мокроты. Чрезвычайно важно, чтобы крышка контейнера, в котором собирается первая жидкость, была заменена, чтобы избежать загрязнения. Если у пациента возникают трудности с откашливанием достаточного количества мокроты, медицинские работники могут применить некоторые физиотерапевтические приемы, которые позволяют постепенно выделять мокроту.Обычный посев мокроты требует, чтобы одна проба была собрана и отправлена ​​в лабораторию в тот же день сбора. Если пациент после забора оставляет образец в холодильнике, часто наблюдается диапазон допустимых отклонений, который может превышать 24 часа. При туберкулезе (ТБ) три образца мокроты необходимо собирать в течение трех дней подряд и каждый день возвращать в клиническую лабораторию.

Индукция мокроты — это процедура, используемая для сбора адекватного количества выделений из нижних дыхательных путей у пациентов, у которых возникают проблемы с выделением мокроты, для помощи в диагностике ТБ.В частности, пациенты с подозрением на милиарный туберкулез и / или туберкулезный плевральный выпот часто становятся мишенью этой адъювантной процедуры. В таких условиях пациент вдыхает небулайзерный гипертонический солевой раствор для разжижения выделений из дыхательных путей. Этот раствор стимулирует кашель пациента и способствует отхождению выделений из дыхательных путей. Медицинские работники готовят 20 мл 3% -ного гипертонического солевого раствора и вводят его в чашку небулайзера, наполненную водой. Подобно неадъювантной процедуре, пациенты всегда должны тщательно полоскать рот.

Кроме того, пациенты носят небулайзерную камеру, чтобы закрывать лицо и нос, сидя в вертикальном положении. Пациенты вдыхают и выдыхают через мундштук. Отхаркивающая слюна в чашу для рвоты и откашливаемая мокрота собираются в стерильный, хорошо закрытый контейнер. Медицинский персонал включает распылитель, чтобы пациент мог вдыхать гипертонический туман в течение примерно пяти минут. Затем пациенты делают несколько глубоких вдохов перед попыткой кашля.Если пациенты испытывают трудности с откашливанием мокроты, медицинский персонал может использовать щадящую физиотерапию грудной клетки, чтобы помочь пациентам получить мокроту. Во время процедуры пациенты должны внимательно наблюдаться медицинским персоналом, чтобы определить любой потенциальный разрыв плевральных булл, вызывающий опасный для жизни пневмоторакс. Пациентам следует остановиться, когда для каждого образца будет собрано от 1 до 2 мл мокроты, или по достижении 15 минут распыления, или когда пациент жалуется на стеснение в груди, одышку или хрипы.Визуализация рекомендуется, если эти симптомы сохраняются в конце сбора мокроты.

Бронхоскопия — это процедура, используемая для исследования горла и дыхательных путей с помощью тонкой смотровой камеры. Он также используется для сбора образцов мокроты в некоторых особых ситуациях, таких как хроническая инфекция, кашель или что-то необычное, наблюдаемое при клинических лабораторных исследованиях или рентгенографии грудной клетки. Образец мокроты будет исследован под микроскопом, чтобы определить, присутствуют ли аномальные клетки.Гибкая бронхоскопия используется чаще, чем жесткая бронхоскопия для сбора образцов мокроты. Перед проведением гибкой бронхоскопии врач может дать пациенту анестетик, чтобы расслабить мышцы горла и обезболить рот, носовые ходы или горло. Процедура выполняется с помощью тонкого и освещенного бронхоскопа, который вводится через рот или нос до горла в дыхательное горло (трахею), а затем в основные бронхи, ведущие к легким. Образцы мокроты могут быть взяты с помощью устройств, пропущенных врачом через бронхоскоп.

Диагностические тесты

Клинические диагностические тесты мокроты направлены на выявление причин инфекций нижних дыхательных путей и некоторых других заболеваний. Он также представляет собой эффективный инструмент для мониторинга эффективности клинического лечения. Посев мокроты — это наиболее частый тест, который необходимо проводить при пневмонии. Он используется для выявления бактерий или грибков, вызывающих инфекцию дыхательных путей или легких.

Микроскопия мазка мокроты — это начальный этап лабораторного анализа мокроты.Это быстрый и недорогой метод именно в условиях ограниченных ресурсов. Окрашивание по Граму используется для дифференциации бактерий на две широкие группы (грамположительные и грамотрицательные микроорганизмы). Окрашивание по Граму — это первый метод окрашивания, выполняемый при предварительной идентификации бактерий, который помогает определить, имеется ли в культуре достаточное количество патогенов, и поставить окончательный диагноз. Это также важно, потому что оно может более конкретно относиться к терапии антибиотиками. С помощью окрашивания по Граму виды бактерий разделяются на грамположительные и грамотрицательные группы по разнице физических и химических свойств клеточных стенок.Некоторые бактерии имеют толстую клеточную стенку пептидогликанового слоя, окрашенную кристаллическим фиолетовым (грамположительные).

Напротив, некоторые другие бактерии имеют более тонкий слой пептидогликана, окрашенный в красный или розовый цвет из-за контрастного окрашивания (грамотрицательный). [2] Если врач подозревает, что у пациента может быть туберкулез или кислотоустойчивые бациллы (КУБ), необходимо провести анализ на окрашивание. Туберкулез — это инфекционное заболевание легких, вызываемое Mycobacterium tuberculosis . Микобактерии представляют собой группу палочковидных кислотоустойчивых бацилл. Их можно различить под микроскопом после процедуры окрашивания AFB, когда бациллы сохраняют окраску после кислотостойкой промывки.Окрашивание метенамином серебром (GMS) Grocott-Gomori — это стандартный метод окрашивания, используемый для обнаружения грибковых микроорганизмов. Окрашивание GMS имеет решающее значение для идентификации Pneumocystis jirovecii . Этот микроорганизм впервые появился у пациентов с инфекцией вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) в 1980-х годах, и его раньше относили к простейшим. Этот микроорганизм, который теперь классифицируется как гриб, первоначально назывался Pneumocystis carinii . Морфология колонии — это метод, который описывает характеристики отдельной колонии бактерий, растущих на агаре в чашке Петри.Это может помочь лаборанту идентифицировать определенные бактерии.

Однако, полагаться только на микроскопические наблюдения и морфологию колоний может быть недостаточно для получения соответствующей информации о виде и роде этиологических микроорганизмов. Следующим шагом для распознавания бактерий являются биохимические тесты на рост бактерий. Общие биохимические тесты, используемые для определения роста бактерий, включают в себя подвижность, стандарт МакФарланда, жидкую тиогликолятную среду (FTM), каталазу и оксидазу.

Респираторные вирусы были протестированы в образцах мокроты пациентов с муковисцидозом, астмой и хронической обструктивной болезнью легких (ХОБЛ). [3] [4] [5] Как правило, вирусное тестирование также проводится на образцах верхних дыхательных путей, таких как мазки из носоглотки или носовые жидкости. Однако некоторые вирусные патогены, такие как коронавирус тяжелого острого респираторного синдрома (SARS), грипп h2N1, коронавирус ближневосточного респираторного синдрома (MERS-CoV) и коронавирус SARS 2 (SARS-CoV-2), возбудитель коронавирусного вирусного заболевания 2019 г. (COVID-19), может отсутствовать в секретах верхних дыхательных путей.[6] [7] [8] [9] Таким образом, образцы мокроты также часто используются для диагностики вирусов с помощью метода клинической полимеразной цепной реакции в реальном времени (ОТ-ПЦР) или недавно разработанного секвенирования следующего поколения ( NGS) метод. Потенциально маски для лица, которые снижают риск передачи аэрозолей в нынешнюю эпоху пандемии COVID-19, также могут быть полезным источником для исследований NGS. [10]

При цитологическом исследовании мокроты под микроскопом определяют, присутствуют ли в образцах мокроты патологические клетки.Тонкий слой мокроты, помещенный на предметное стекло перед определенным окрашиванием и диагностированный непосредственно под микроскопом, помогает обнаружить некоторые аномальные клетки. Цитология мокроты помогает обнаруживать как клетки рака легких, так и нераковый клеточный и бесклеточный материал, полезный для диагностики таких состояний, как пневмония, туберкулез, интерстициальные заболевания легких или пневмокониоз (например, асбестоз). Окрашивание гематоксилином и эозином — это наиболее часто используемое окрашивание тканей в медицинской лабораторной диагностике во всем мире. Его часто считают золотым стандартом.[11] [12]. Он в основном используется для образцов с подозрением на рак легких. Окрашивание периодической кислотой по Шиффу (PAS) используется для обнаружения полисахаридов и слизистых веществ в образцах тканей. В основном это полезно для обнаружения живых грибов в образцах мокроты.

Кроме того, для окрашивания мазков мокроты используют окраску Райта, окраску Гимзы и окраску смесью Райта-Гимзы. Эти методы окрашивания облегчают дифференциацию типов клеток крови с помощью специальных растворов. Эти методы окрашивания помогают обнаружить аномальные лейкоциты в мокроте, которые являются жизненно важными признаками легочной инфекции.

Молекулярный анализ мокроты — это новый подход и усовершенствованный метод, используемый для обнаружения биомаркеров, связанных с раком легких, для помощи на ранней стадии диагностики рака легких. Многие мутации ДНК, такие как p53 , KRAS , EML4-ALK, и GFR мутации, были исследованы на образцах мокроты. [13] [14] [15] Сообщалось также о гиперметилировании ДНК в образцах мокроты при раке легких. Потеря гетерозиготности (LOH) и микросателлитная нестабильность (MSI) были обнаружены в образцах мокроты пациентов с раком легких с помощью ДНК-маркеров.[16] МикроРНК (miRNA), такие как miR-21 и miR-155, белки, такие как лиганд, индуцирующий пролиферацию (APRIL) и фактор комплемента H, были значительно сверхэкспрессированы, а некоторые информационные РНК (мРНК), такие как APRIL , MAGE , Теломераза , CEA, и др. Были обнаружены в образцах мокроты пациентов с раком легкого с помощью ОТ-ПЦР и иммуноцитохимии. [17] Тем не менее, другие молекулярные биомаркеры, такие как свободная ДНК и варианты митохондриальной ДНК (мтДНК), кажутся многообещающими.[17]

Наконец, тест на чувствительность к противомикробным препаратам в мокроте проводится на бактериях или грибах, что приводит к легочной инфекции после выявления в образце культуры мокроты. Наиболее распространенные подходы состоят из методов дисковой диффузии и минимальной ингибирующей концентрации (МИК). Эти тесты используются для определения эффективности конкретных антибиотиков в отношении бактерий или для определения того, выработали ли бактерии уже устойчивость к некоторым определенным антибиотикам или нет. Результаты тестирования на чувствительность к противомикробным препаратам помогают выбрать наиболее эффективные антибиотики для лечения легочной инфекции.

Процедуры тестирования

Процедура посева мокроты

Образец мокроты добавляется в чашку для культивирования со специфическим веществом, которое способствует росту бактерий или грибков. Затем закройте чашку крышкой и поместите ее в инкубатор с температурой 37 ° C. Специалист лаборатории должен ежедневно проверять рост бактерий или грибков в пластине мокроты. Как только посев мокроты окажется положительным, будут выполнены микроскопия, морфология колоний или биохимические тесты роста бактерий для определения конкретного типа бактерии или грибка.

Процедура исследования окрашивания мокроты

Образец мокроты представляет собой мазок на предметном стекле микроскопа. К клеткам, бактериям или грибам образца на предметных стеклах добавляют различные окрашивающие красители, а затем промывают их водой, спиртом или растворами кислоты. Затем слайды диагностируются под микроскопом. Если в образцах обнаружены бактерии, грибки или определенные клетки, результаты будут положительными.

Процедура биохимического анализа мокроты

Чтобы идентифицировать подозреваемый организм, сначала бактерии будут инокулированы в серии дифференциальных сред.Затем используйте различные индикаторы для наблюдения за конкретными конечными продуктами метаболизма внутри среды.

Процедура цитологического исследования мокроты

Препарат мазка мокроты окрашивают разными красителями согласно инструкции. Затем патологоанатом исследует окрашенное предметное стекло под микроскопом, чтобы найти аномальные клетки в образце мокроты.

Процедура испытания амплификации нуклеиновых кислот мокроты

РНК или ДНК выделяют из образца мокроты в соответствии с инструкциями к различным коммерческим наборам.ДНК или РНК добавляют в реакционную пробирку для ПЦР с разработанными праймерами, полимеразой Taq , дезоксинуклеозидтрифосфатами [dNTP] и флуоресцентно меченным зондом. Затем пробирка с реакционной смесью RT-PCR помещается в устройство PCR в реальном времени для амплификации молекул при определенных температурах.

Процедура исследования чувствительности к противомикробным препаратам мокроты

Для метода МИК бактерии или грибки, выделенные из образцов мокроты, разводили в физиологическом растворе и наносили мазками на панели МИК.Для метода диффузии в чашках выбранные различные концентрации антибиотиков помещают непосредственно на чашки с агаром, пропитанные бактериями. Панели или планшеты инкубируют при 35 ° C в течение примерно 16-18 часов или дольше. Минимальная концентрация антибиотика, подавляющая рост организмов, или панель МИК считываются в соответствии с рекомендациями различных производителей. Затем сообщается результат.

Мешающие факторы

Многие мешающие факторы влияют на результаты каждого этапа диагностики мокроты.Любое отклонение от стандартной процедуры сбора образцов, посева, окрашивания, тестов на биохимическую, молекулярную и противомикробную чувствительность может существенно повлиять на результат диагностики, напрямую влияя на клиническое ведение пациента. Поэтому для проведения анализа мокроты требуются строгие лабораторные процедуры и хорошо обученные лабораторные технологи.

Отбор образца мокроты хорошего качества — это первый шаг к получению: патогены, выявленные при посеве мокроты, не всегда происходят от инфекций нижних дыхательных путей, поскольку они могут быть частью контаминантных участков или уже существовать во флоре полости рта.Таким образом, стандартные микробиологические процедуры выделения и идентификации организмов имеют решающее значение для оценки качества мокроты (ОК).

Контроль качества остается важным инструментом в лаборатории для различения настоящих респираторных патогенов от возможной колонизирующей флоры. Наконец, жизненно важно проверять качество коммерческих продуктов, которые должны быть одобрены Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США, Агентством общественного здравоохранения Канады, а также аналогичными агентствами Европы и Австралии.Планшеты низкого качества для культивирования, наборы для окрашивания с истекшим сроком годности или неэффективные наборы для молекулярной биологии напрямую связаны с плохой производительностью. Несколько агентств определяют качество, выполняемое в лаборатории, и Коллегия американских патологов играет важную роль в установлении лабораторных стандартов и процедур контроля качества, которые необходимы для предотвращения различных мешающих факторов.

Результаты, отчеты, важные выводы

Посев мокроты

Если патогенные организмы вырастут после 24 часов инкубации в культуральной чашке, результат будет положительным.Некоторые чашки для образцов будут инкубироваться дольше, в зависимости от присутствующей микробной флоры и необходимости выявления полуколичественных изолятов и проведения тестов на чувствительность к противомикробным препаратам. И наоборот, если бактерии или грибки не растут в течение 6-8 недель для твердых питательных сред или за шесть недель для жидких питательных сред, результат будет отрицательным.

Тесты на окрашивание мокроты

  • Тест окрашивания по Граму: бактерии, обнаруженные с помощью теста, будут грамположительными или грамотрицательными.
    • Общие грамположительные бактерии включают Staphylococcus , Streptococcus , Bacillus , Listeria , Enterococcus, и Clostridium .

    • Общие грамотрицательные бактерии включают E. coli , виды Klebsiella , виды Proteus , и Pseudomonas aeruginosa .

  • Тест на окрашивание AFB: бактерии, обнаруженные с помощью теста, будут положительными или отрицательными.
    • Положительный результат теста на окрашивание AFB: кислотоустойчивые бациллы, такие как Mycobacterium tuberculosis , сохраняют красный или розовый цвет.

    • Отрицательный результат теста на окрашивание AFB: ни красных, ни розовых бактерий на окрашенном предметном стекле не обнаружено.

  • Тест на окрашивание GMS: грибковые организмы, обнаруженные с помощью теста, будут положительными или отрицательными.
    • Положительный результат теста GMS: черная или коричневая стенка от грибковых организмов или червей, таких как Pneumocystis jirovecii, обнаружено .

    • Отрицательный результат теста GMS: грибковые организмы или черви, окрашенные в черный или коричневый цвет, не обнаружены.

Биохимические тесты мокроты: тесты на подвижность, стандарт МакФарланда, каталазу и оксидазу положительные или отрицательные.

  • Тест на подвижность организмов: тест проводится на грамотрицательных кишечных палочках, результат будет либо подвижным, либо неподвижным.
    • Подвижный (положительный результат): организмы распространяются от линии укола и вызывают помутнение или помутнение среды.

    • Неподвижный (отрицательный): микроорганизмы останутся вдоль линии укола после инокуляции.

  • Стандартный тест МакФарланда: Тест используется для стандартизации количества бактерий в жидких суспензиях по мутности бактерий в стандартном флаконе или пробирке МакФарланда.Результат теста получается путем сравнения мутности бактериальной суспензии с различными концентрациями стандартных растворов МакФарланда.

  • Тест FTM: тест используется для определения аэротолерантности бактерий.
    • Облигатные аэробы, такие как Pseudomonas spp. , нуждающийся в кислороде для роста, будет расти только к богатому кислородом поверхностному слою.

    • Облигатные анаэробы, которые не могут расти с кислородом, будут расти только на дне трубки.

    • Микроаэрофилы часто растут ниже богатого кислородом слоя.

    • Грамотрицательные, факультативные или аэротолерантные анаэробы обычно могут расти по всему бульону, но в основном они будут расти между богатой кислородом и бескислородной областью.

  • Тест на каталазу: Тест используется для дифференциации стафилококков от стрептококков путем определения наличия каталазы.
    • Каталаза-положительный: организмы могут производить каталазу, которая будет генерировать пузырьки кислорода после добавления 3% перекиси водорода.

    • Каталаза-отрицательная: микроорганизмы не могут продуцировать каталазу, и после добавления 3% перекиси водорода реакция не происходит.

  • Оксидазный тест: Тест используется для выявления присутствия цитохром с оксидаз.

Тест амплификации нуклеиновых кислот мокроты

Если амплификация ОТ-ПЦР прошла успешно, результат положительный. Однако в случае неудачи результат будет отрицательным.

Цитологическое исследование мокроты

Если в образце мокроты было обнаружено несколько лейкоцитов и не было обнаружено никаких аномальных клеток, это означает, что цитологическое исследование мокроты проводится регулярно, и другие причины могут вызвать симптомы у пациента.

Тест на чувствительность к противомикробным препаратам мокроты

Если антибиотики подавляют рост организма, это означает, что антибиотики работают для лечения пациента, инфицированного этим организмом, и антибиотики чувствительны. И наоборот, если антибиотик не подавляет рост организма, это означает, что антибиотики не подходят для лечения пациента, а антибиотики устойчивы.

Клиническая значимость

Анализ мокроты необходим для выявления причин, приводящих к различным заболеваниям дыхательных путей и легких.Точный диагноз напрямую связан со стратегией, которую врач использует для лечения пациентов. При инфекционных заболеваниях лаборант сначала пытается определить возбудителей, а затем тестирует различные лекарства, которые можно использовать для лечения. При подозрении на рак легких и некоторых незлокачественных состояниях легких лаборатория проверяет, существуют ли аномальные клетки в образцах мокроты или нет.

Контроль качества и лабораторная безопасность

Контроль качества анализа мокроты имеет важное значение и напрямую влияет на результаты диагностики.От сбора образцов мокроты, транспортировки образцов, хранения образцов, среды диагностических процедур тестирования до составления отчетов о результатах тестов — каждый шаг должен строго выполняться в соответствии со стандартными руководящими принципами. В 1988 году Конгресс Соединенных Штатов Америки принял Поправки по улучшению клинических лабораторий (CLIA). Институт клинических и лабораторных стандартов (CLSI) был создан для минимизации ошибок анализа и максимального контроля переменных теста. Аналогичные законопроекты есть и для других стран.Во время диагностических тестов всегда следует выполнять стандартный положительный контроль, контроль чувствительности и отрицательный контроль, когда лаборант выполняет анализы образцов мокроты. О результатах диагностики не следует сообщать, если измерения контроля качества не разрешены.

Персонал, работающий в лаборатории, должен соблюдать строгие правила и меры безопасности в лаборатории. В зависимости от конкретных диагностических тестов результаты оценки процедурного риска могут быть разными. Всегда полезно рассматривать образцы мокроты как потенциально инфекционные, и необходимо принять важные меры биобезопасности для ограничения или снижения риска лабораторной инфекции при выполнении определенных процедур.CLSI предоставил новые практические рекомендации по применению управления рисками как к планам контроля качества, так и к статистическому контролю качества. [18] [19]

Улучшение результатов команды здравоохранения

Результаты диагностики мокроты включают множество различных заболеваний, таких как респираторные инфекции, рак легких и незлокачественные заболевания легких. Пневмония — это наиболее распространенное инфекционное заболевание легких, которое может быть связано с потенциальным распространением. Нелеченная пневмония может привести к тяжелым осложнениям. Рак легких занимает четвертое место среди наиболее часто диагностируемых злокачественных новообразований в развитых странах и первое место по смертности от рака во всем мире.[20] Несмотря на высокую заболеваемость и смертность от пневмонии и рака легких, лечения мало [21] [22] [23]. Таким образом, требование мультидисциплинарного подхода имеет важное значение для пациента, чтобы получить наиболее подходящие решения лабораторной диагностики, основанные на фактических данных, клиническое лечение и медицинскую поддержку. Этот междисциплинарный командный подход включает специалиста по лабораторной диагностике, радиолога, пульмонолога, специалиста по инфекционным заболеваниям, фармацевта и медсестру общественного здравоохранения.

В зависимости от симптомов пациента пульмонолог или инфекционист назначает лабораторные анализы.Затем медсестра или медицинский работник соберет образец мокроты и отправит его в клиническую лабораторию. Лабораторный специалист проведет диагностические тесты на образец мокроты и сообщит о результатах. Радиологу также может потребоваться рентген грудной клетки пациента. Когда врач получает отчеты о диагностике мокроты, он может прописать пациенту препараты для лечения. Затем медсестра проведет клиническую терапию.

После выписки пациента из больницы медсестра должна обучить пациента и членов семьи тому, как заботиться о хорошем здоровье.После этого фармацевт будет наблюдать за амбулаторным лечением и следить за тем, чтобы пациент его соблюдал. Если у пациента аллергия на какие-либо лекарства или он испытывает трудности с соблюдением режима лечения, фармацевт должен сообщить о ситуации межпрофессиональной группе. Кроме того, нужен социальный работник для духовной и финансовой поддержки амбулаторного больного. Чтобы лечение в домашних условиях работало для пациента, необходимы регулярный последующий серийный мониторинг в клинической лаборатории и визуальные исследования, проводимые радиологом.

Результатов

Многопрофильный командный подход способствует оказанию высококачественных медицинских услуг пациенту. Предыдущие данные свидетельствуют о том, что пациенты более удовлетворены традиционной моделью ухода и улучшают качество жизни, если получают междисциплинарную помощь. [24] [25]

Список литературы

1.
Hu S, Loo JA, Wong DT. Анализ протеома жидкости человеческого тела. Протеомика. 2006 декабрь; 6 (23): 6326-53. [Бесплатная статья PMC: PMC22] [PubMed: 17083142]
2.
Беверидж Т.Дж., Дэвис Дж.А. Клеточные ответы Bacillus subtilis и Escherichia coli на окрашивание по Граму. J Bacteriol. 1983 ноябрь; 156 (2): 846-58. [Бесплатная статья PMC: PMC217903] [PubMed: 6195148]
3.
Burns JL, Emerson J, Kuypers J, Campbell AP, Gibson RL, McNamara S, Worrell K, Englund JA. Респираторные вирусы у детей с муковисцидозом: обнаружение вирусов и клинические данные. Другие вирусы гриппа респира. 2012 Май; 6 (3): 218-23. [Бесплатная статья PMC: PMC4941093] [PubMed: 21955319]
4.
Harju TH, Leinonen M, Nokso-Koivisto J, Korhonen T., Räty R, He Q, Hovi T, Mertsola J, Bloigu A, Rytilä P, Saikku P. Патогенные бактерии и вирусы в индуцированной мокроте или глоточных выделениях взрослых с стабильная астма. Грудная клетка. Июль 2006; 61 (7): 579-84. [Бесплатная статья PMC: PMC2104650] [PubMed: 16517571]
5.
Rohde G, Wiethege A, Borg I, Kauth M, Bauer TT, Gillissen A, Bufe A, Schultze-Werninghaus G. Респираторные вирусы при обострениях хронического обструктивная болезнь легких, требующая госпитализации: исследование случай-контроль.Грудная клетка. 2003 Янв; 58 (1): 37-42. [Бесплатная статья PMC: PMC1746460] [PubMed: 12511718]
6.
Muller MP, McGeer A. Коронавирус тяжелого острого респираторного синдрома (SARS). Semin Respir Crit Care Med. 2007 Апрель; 28 (2): 201-12. [PubMed: 17458774]
7.
Mulrennan S, Tempone SS, Ling IT, Williams SH, Gan GC, Murray RJ, Speers DJ. Пандемический грипп (h2N1) — пневмония — 2009: оценка CURB-65 для прогнозирования тяжести и забор образцов из носоглотки для диагностики ненадежны. PLoS One.2010 21 сентября; 5 (9): e12849. [Бесплатная статья PMC: PMC2943473] [PubMed: 20877727]
8.
Ассири А., Ат-Тауфик Дж.А., Аль-Рабиах А.А., Аль-Рабиа Ф.А., Аль-Хаджар С., Аль-Баррак А., Флембан Х., Аль -Нассир В.Н., Балхи Х.Х., Аль-Хаким РФ, штаб-квартира Махдума, Зумла А.И., Мемиш З.А. Эпидемиологические, демографические и клинические характеристики 47 случаев заболевания коронавирусом ближневосточного респираторного синдрома из Саудовской Аравии: описательное исследование. Lancet Infect Dis. 2013 сентябрь; 13 (9): 752-61. [Бесплатная статья PMC: PMC7185445] [PubMed: 23891402]
9.
Mawaddah A, Gendeh HS, Lum SG, Marina MB. Отбор проб верхних дыхательных путей при COVID-19. Malays J Pathol. 2020 Апрель; 42 (1): 23-35. [PubMed: 32342928]
10.
Бернетт М.Л., Серджи С.М. Маски для лица полезны независимо от уровня инфекции в борьбе с COVID-19. Подготовка к общественному здравоохранению Disaster Med. 2020 Октябрь; 14 (5): e47-e50. [Бесплатная статья PMC: PMC7550874] [PubMed: 32

0]

11.
Титфорд М. Долгая история гематоксилина. Biotech Histochem.2005 март-апрель; 80 (2): 73-8. [PubMed: 16195172]
12.
Rosai J. Почему микроскопия останется краеугольным камнем хирургической патологии. Lab Invest. 2007 Май; 87 (5): 403-8. [PubMed: 17401434]
13.
Hanahan D, Weinberg RA. Признаки рака: следующее поколение. Клетка. 2011 04 марта; 144 (5): 646-74. [PubMed: 21376230]
14.
Takeuchi K, Choi YL, Soda M, Inamura K, Togashi Y, Hatano S, Enomoto M, Takada S, Yamashita Y, Satoh Y, Okumura S, Nakagawa K, Ishikawa Y, Мано Х.Мультиплексный ПЦР-скрининг с обратной транскрипцией для транскриптов слияния EML4-ALK. Clin Cancer Res. 15 октября 2008 г .; 14 (20): 6618-24. [PubMed: 18927303]
15.
Шарма С.В., Белл Д.В., Сеттлман Дж., Хабер Д.А. Мутации рецепторов эпидермального фактора роста при раке легких. Нат Рев Рак. 2007 Март; 7 (3): 169-81. [PubMed: 17318210]
16.
Hsu HS, Chen TP, Wen CK, Hung CH, Chen CY, Chen JT, Wang YC. Множественные генетические и эпигенетические биомаркеры для выявления рака легких в цитологически отрицательной мокроте и вложенное исследование случай-контроль для оценки риска.J Pathol. 2007 декабрь; 213 (4): 412-9. [PubMed: 17973238]
17.
Hubers AJ, Prinsen CF, Sozzi G, Witte BI, Thunnissen E. Молекулярный анализ мокроты для диагностики рака легких. Br J Рак. 2013 6 августа; 109 (3): 530-7. [Бесплатная статья PMC: PMC3738145] [PubMed: 23868001]
18.
Bruno LC. IQCP: руководство и полезные инструменты для реализации. Lab Med. 2016 ноя; 47 (4): e42-e46. [PubMed: 27708173]
19.
Андерсон Н. Индивидуальный план контроля качества — скоро появится в лабораториях клинической микробиологии повсюду! Clin Microbiol Newsl.2015 15 ноября; 37 (22): 177-185. [Бесплатная статья PMC: PMC4791576] [PubMed: 26997689]
20.
Хортон Р. ГББ 2010: понимание болезней, травм и рисков. Ланцет. 2012 15 декабря; 380 (9859): 2053-4. [PubMed: 23245595]
21.
Hickling KG, Howard R. Ретроспективный обзор лечения и смертности при аспирационной пневмонии. Intensive Care Med. 1988; 14 (6): 617-22. [PubMed: 3053842]
22.
Комия К., Исии Х., Умэки К., Мизуноэ С., Окада Ф., Джохох Т., Кадота Дж.Влияние аспирационной пневмонии у пациентов с внебольничной пневмонией и пневмонией, связанной с оказанием медицинской помощи: многоцентровое ретроспективное когортное исследование. Респирология. 2013 Апрель; 18 (3): 514-21. [PubMed: 23231701]
23.
Дентон Э., Конрон М. Улучшение результатов лечения рака легких: ценность многопрофильной команды здравоохранения. J Мультидисциплинарное здравоохранениеc. 2016; 9: 137-44. [Бесплатная статья PMC: PMC4820200] [PubMed: 27099511]
24.
Гриффин Дж. П., Кох К. А., Нельсон Дж. Э., Кули М. Е.., Американский колледж грудных врачей. Консультации по паллиативной помощи, измерения качества жизни и уход за близкими в конце жизни у пациентов с раком легких: руководящие принципы клинической практики ACCP, основанные на фактических данных (2-е издание). Грудь. 2007 сентябрь; 132 (3 доп.): 404S-422S. [PubMed: 17873182]
25.
Hirsch-Moverman Y, Howard AA, Frederix K, Lebelo L., Hesseling A, Nachman S, Mantell JE, Lekhela T., Maama LB, El-Sadr WM. Исследование PREVENT для оценки эффективности и приемлемости вмешательства на уровне общины по профилактике детского туберкулеза в Лесото: протокол исследования для кластерного рандомизированного контролируемого исследования.Испытания. 2017 21 ноября; 18 (1): 552. [Бесплатная статья PMC: PMC5697438] [PubMed: 29157275]

Frontiers | Качество образцов мокроты как прогностический фактор изолированных бактерий от пациентов с инфекциями нижних дыхательных путей в специализированной больнице, Денпасар, Бали, Индонезия

Введение

Устойчивость к противомикробным препаратам (УПП) — это глобальная проблема, которая угрожает общественному здоровью, вызывая значительный рост заболеваемости и смертности во всем мире (1–3). Отчет ВОЗ по эпиднадзору за 2014 г. показывает, что во всем мире 3.По оценкам, 6% новых случаев ТБ и 20,2% пролеченных случаев являются носителями ТБ с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ-ТБ), в основном в Восточной Европе и Центральной Азии, где только около 48% из них были излечены и даже хуже всего среди пациентов с широкой лекарственной устойчивостью ( ШЛУ-ТБ). УПП также обременяет экономику любой страны (4). Согласно одним из данных, от 21 до 34 миллиардов долларов США, сопровождаемых значительным увеличением продолжительности пребывания в больнице, составляют затраты на УПП, потраченные системой здравоохранения США (4). Хотя, согласно данным эпиднадзора за 2012 год в Индонезии, произошло сокращение ненадлежащего использования антибиотиков, ненадлежащее использование антибиотиков в больницах все еще было очень высоким (42%).Кроме того, увеличилась распространенность бактерий с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ), таких как бета-лактамаза расширенного спектра (БЛРС) K. pneumoniae (58%) и ESBL E coli (52%) и MRSA (24%). (5). Предполагается, что злоупотребление антибиотиками как по количеству, так и по качеству является основным триггером возникновения УПП (6, 7). Обычно антибиотики используются для эмпирической и окончательной терапии (8). Оба метода лечения должны определяться результатом посева, который во многом зависит от качества исследуемого образца (9–11).Образцы низкого качества приводят к неправильной идентификации типа бактерий и ошибкам при определении антибиотиков для тестирования чувствительности (12, 13).

Мокрота — один из наиболее частых образцов, получаемых в лаборатории клинической микробиологии больницы (14). Мокрота хорошего качества поможет выбрать правильные антибиотики, которые уменьшат и предотвратят возникновение УПП. Однако мокрота также является образцом с высокой степенью загрязнения нормальной флорой во время сбора (15–19).Это обследование также может обеспечить прогнозирование изолированных патогенных бактерий, что является важной информацией для облегчения назначения эмпирической антибактериальной терапии. Перед процедурой посева необходимо микроскопическое исследование мокроты (18, 20–22).

Это исследование направлено на изучение связи между качеством мокроты и типами изолированных бактерий в специализированной больнице Санглаха на Бали. Больница Санглах является третьей и крупнейшей специализированной больницей в провинции Бали с вместимостью 750 коек.Больница Sanglah, являющаяся высшим уровнем специализированной больницы, обычно лечит пациентов в критическом состоянии или тех, кто направлен из других больниц. Эти знания помогут клиницистам оценить тип изолированных бактерий и определить терапию антибиотиками.

Материалы и методы

Этическое разрешение и разрешение на использование данных из Регистрационной книги отделения микробиологии больницы Санглаха было предоставлено главным исполнительным директором больницы Санглаха, No.КП. 03.02 / X / V.2.1.1 / 8154/2018 от 28 февраля 2018 г. Информированное согласие пациента или его семьи было предоставлено до взятия пробы. Госпиталь Санглах является национальным стандартизированным госпиталем, поэтому приняты все меры биобезопасности. Все работы выполнены в условиях содержания 2 уровня биозащищенности.

Ретроспективное поперечное исследование было проведено в лаборатории клинической микробиологии больницы Сангла, Денпасар с января по июнь 2018 года. Все исследуемые образцы включали образцы мокроты, полученные лабораторией и запрошенные для посева мокроты.Образцы представляли собой образцы мокроты от пациентов с инфекциями нижних дыхательных путей (ИНДП), прошедшие окрашивание по Граму и тест на посев мокроты. Диагноз ИНДП был поставлен на основании диагноза из медицинской карты, сделанного пульмонологическим отделением больницы Санглах. Образцы оценивали на предмет микроскопических характеристик путем окрашивания по Граму и выращивали в агаровых средах Blood, McConkey и Chocolate. Качество образцов мокроты определялось на основе критериев Мюррея-Вашингтона (23), которые применялись ранее (24, 25).Хорошим качеством были образцы с плоским эпителием ≤10 и лейкоцитами> 25. В противном случае он был признан некачественным экземпляром.

Образцы культивировали и инкубировали от 18 до 24 часов при 37 ° C. Среды без жизнеспособного роста считались стерильными, а среды с ростом более двух колоний были классифицированы как нормальная флора (26). Доминирующая колония, предположительно являющаяся возбудителем, была взята для дальнейшей идентификации и протестирована на чувствительность к антибиотикам с использованием полуавтоматического VITEK2 COMPACT (bioMeriux).

Отношение шансов и критерий хи-квадрат Пирсона были рассчитаны с использованием статистического пакета для социальных наук (SPSS) версии 22.

Результаты

В течение периода исследования 726 образцов мокроты от пациентов с ИНДП были приняты лабораторией клинической микробиологии больницы Сангла, Денпасар, Бали, Индонезия. Процент собранных образцов мокроты в зависимости от их качества с января по июнь 2018 г. представлен в таблице 1. Мы обнаружили, что среднемесячное количество некачественной мокроты во время исследования составляло 41.4%. Самый высокий показатель был в мае (43%), а самый низкий — в январе (39,59%).

Таблица 1 . Процент собранных образцов мокроты в зависимости от их качества с января по июнь 2018 года в специализированной больнице Tertiary Sanglah на Бали, Индонезия.

Идентификация на основе вирулентности выделенных бактерий показала, что 70,2% изолятов из мокроты низкого качества были непатогенными бактериями, а в мокроте хорошего качества — 35,6%. Более того, процент отсутствия роста из мокроты хорошего качества был выше, чем из мокроты некачественного качества.Было обнаружено, что 48 из 726 (6,6%) образцов не показали жизнеспособного роста на среде, и те были взяты из эндотрахеальной трубки у пациентов с вентилятор-ассоциированной пневмонией (ВАП) (таблица 2). Основываясь на результатах идентификации, мы обнаружили, что большинство бактерий, выделенных из мокроты хорошего качества, были грамотрицательными; тогда как грамположительные, нормальная флора и Candida spp. преобладали изоляты из некачественной мокроты (рис. 1). Статистический анализ показал, что существует взаимосвязь между изолированными бактериями и качеством мокроты (OR = 3.844; p <0,001). Кроме того, вероятность выделения патогенных бактерий из образцов хорошего качества была значительной ( p <0,001).

Таблица 2 . Распространение полностью изолированных микроорганизмов из качественных и некачественных образцов мокроты с января по июнь 2018 года в специализированной больнице Tertiary Sanglah на Бали, Индонезия.

Рисунок 1 . Процент групп микроорганизмов на основе посева мокроты, полученный с января по июнь 2018 года в специализированной больнице Tertiary Sanglah на Бали, Индонезия.Серые и заполненные коробки — это мокрота плохого и хорошего качества соответственно.

грамположительные бактерии

Доминирующими грамположительными бактериями были Streptococcus mitis и коагулазонегативные стафилококки (CoNS) из мокроты плохого и хорошего качества соответственно. Обе бактерии являются нормальной флорой и иногда обнаруживаются как условно-патогенные бактерии в верхних дыхательных путях (рис. 2).

Рисунок 2 . Количество грамположительных бактерий, выделенных при посеве мокроты с января по июнь 2018 года в специализированной больнице Санглаха на Бали, Индонезия.Серые и заполненные коробки — это мокрота плохого и хорошего качества соответственно.

Грамотрицательные бактерии

грамотрицательные бактерии, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii и Pseudomonas aeruginosa были выделены из обоих типов образцов, однако большинство этих бактерий было обнаружено в мокроте хорошего качества. Все эти доминирующие бактерии известны как частая причина HAP и поздней VAP (Рисунок 3).

Рисунок 3 .Число грамотрицательных бактерий, выделенных при посеве мокроты с января по июнь 2018 года в специализированной больнице Tertiary Sanglah на Бали, Индонезия. Серые и заполненные коробки — это мокрота плохого и хорошего качества соответственно.

Дрожжи (

Candida spp.)

Количество Candida albican , идентифицированных в мокроте плохого и хорошего качества, составляло 19 и 14 изолятов, тогда как другие виды составляли 25 и 16 изолятов, соответственно (данные не показаны).

Обсуждение

Ежемесячная оценка качества мокроты показала, что в среднем 41% образцов были отнесены к категории некачественной мокроты.Между тем приемлемый уровень некачественной мокроты ежемесячно составляет 25% от общего количества образцов мокроты (27). Если процент некачественных образцов превышает пороговый предел в течение трех месяцев подряд, необходимо провести повторное обучение оценке и сбору образцов. Результаты этого наблюдения указывают на отсутствие надзора и контроля за качеством мокроты, полученной в лаборатории.

Результаты показали, что существует значительная разница в типах патогенных и непатогенных бактерий в обеих категориях образца мокроты, что соответствует результатам, полученным в другом исследовании (26).Однако это исследование показало, что доля некачественной мокроты достигла почти половины всех полученных образцов. Если некачественные образцы перейдут к процедурам идентификации бактерий, лабораторные операции, такие как человеческие ресурсы и реагенты, будут потеряны. В другом исследовании образцы мокроты отклонялись с самого начала микроскопической характеристики, когда были обнаружены образцы низкого качества, и процесс идентификации был прерван (28).

В мокроте хорошего качества жизнеспособного роста не обнаружено.Это может быть вызвано действием антибиотиков, употребленных пациентом перед забором образцов. Будучи самой высококлассной специализированной больницей, Sanglah Hospital обычно лечит направленных и тяжелых пациентов, поэтому большинство из них получают лечение антибиотиками. По этой причине очень необходима способность клинических микробиологов сотрудничать с клиницистами. Клинический микробиолог должен не только работать в лаборатории, но и должен идти вместе с клиницистом, чтобы увидеть и обсудить состояние пациента. В настоящее время в Индонезии по-прежнему много клинических микробиологов, которые не хотят сотрудничать с клиницистами для обсуждения проблем.Иногда экспертиза обследования основывается только на листе запроса пациента. С другой стороны, многие врачи по-прежнему считают клиническую микробиологию только лабораторной. Это приводит к ухудшению использования антибиотиков в больнице, так что угроза УПП возрастает, а за ней — высокий уровень заболеваемости и смертности.

Не может произойти жизнеспособного роста у пациентов из-за вируса или грибов, являющихся возбудителями ИДПТ (29–31). Поскольку соотношение лейкоцитов и эпителиальных клеток использовалось для определения качества мокроты, в мокроте от пациентов с инфекцией было увеличено количество лейкоцитов, несмотря на инфекцию от других патогенов.

Многие CoNS были культивированы из мокроты хорошего качества, тогда как изоляты Streptococcus mitis были в основном из мокроты низкого качества. Обе бактерии относятся к флоре верхних дыхательных путей. CoNS, известный как условно-патогенный микроорганизм и доминирующие колонии в питательной среде, иногда рассматривается как причина инфекции, особенно когда он обнаруживается в образцах мокроты хорошего качества. Некоторые заболевания, такие как ранняя ВАП и аспирационная пневмония, могут превратить эти бактерии в патогенные микроорганизмы.Группа обычно обнаруживаемых грамотрицательных бактерий в больницах, K. pneumoniae, A. baumannii и P. aeruginosa , доминировала как в хорошей, так и в некачественной культуре мокроты, хотя количество этих бактерий было выделено больше. из доброкачественной мокроты. Эти результаты отличаются от результатов другого исследования, в котором было обнаружено, что большая часть Streptococcus pneumoniae была выделена из мокроты пациента (32). Это может быть вызвано образцами мокроты, взятыми у пациентов с HAP или у пациентов, прошедших длительную терапию антибиотиками.Высокая вариабельность по типу и количеству изолированных Candida spp. указывает на длительный прием антибиотиков. Посевное исследование перед назначением эмпирического или изменяющегося курса лечения антибиотиками еще не является обычным делом для врачей в развивающихся странах. В больницах Индонезии его часто применяют для проведения посевов только в том случае, если у пациента нет признаков улучшения после инфекции и он уже лечился с помощью различных антибиотиков.

Основными ограничениями этой статьи были моменты времени, когда брали образец, и подробный анамнез антибактериальной терапии не был доступен в форме запроса, а также введение антибиотиков без посева.Это серьезная проблема в развивающихся странах (33, 34).

Некоторые факторы препятствовали передовой практике клинической микробиологии в развивающихся странах, особенно в Индонезии. Эти факторы включают отсутствие специального образования для аналитиков микробиологических лабораторий, ограниченное количество клинических микробиологов по сравнению с общей территорией и населением Индонезии, недостаточная осведомленность врачей о важности посевов для проведения окончательной терапии и нежелание сотрудничать клиницистами. и клинические микробиологи в лечении инфекций.Все эти факторы должны быть устранены немедленно, чтобы можно было применять передовые методы клинической микробиологии. Не только с точки зрения человеческих ресурсов, но и лабораторных помещений и инфраструктуры с квалифицированными человеческими ресурсами. Обучение и распространение информации о роли клинической микробиологии в лечении случаев инфекции, особенно в выборе антибиотиков, должно быть незамедлительно осуществлено, чтобы снизить рост заболеваемости УПП в Индонезии.

Авторские взносы

NB и DS разработали и контролировали исследование.NB интерпретировал данные и подготовил рукопись при поддержке DS. KS и II был организован сбор данных, включая отбор и подготовку образцов, а также анализ данных. Все авторы одобрили окончательный вариант рукописи.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Мы хотели бы поблагодарить больницу Санглах Денпасар и ее Отдел микробиологии за поддержку в сборе и исследовании образцов для этого исследования.Спасибо I Dewa Gde Sathya Deva за вклад в подготовку рукописи. Окончательная версия рукописи была улучшена профессором Густи Нгурах Махардикой из Университета Удаяна.

Список литературы

2. Аслам Б., Ван В., Аршад М. И., Хуршид М., Музаммил С., Расул М. Х. и др. Устойчивость к антибиотикам: краткое изложение глобального кризиса. Устойчивость к лекарствам от инфекций . (2018) 11: 1645–58. DOI: 10.2147 / IDR.S173867

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

4.КТО. Устойчивость к противомикробным препаратам: Глобальный отчет о надзоре . Франция: Всемирная организация здравоохранения (2014).

5. Хади У, Кунтаман К., Киптия М., Паратон Х. Проблема использования антибиотиков и устойчивость к противомикробным препаратам в Индонезии: действительно ли мы добиваемся прогресса? Indonesia J Trop Infect Dis. (2013) 4: 5–8. DOI: 10.20473 / ijtid.v4i4.222

CrossRef Полный текст | Google Scholar

6. Ферри М., Рануччи Э., Романьоли П., Джакконе В. Устойчивость к противомикробным препаратам: новая глобальная угроза для систем общественного здравоохранения. Crit Rev Food Sci Nutr . (2017) 57: 2857–76. DOI: 10.1080 / 10408398.2015.1077192

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

7. Флетчер С. Понимание вклада факторов окружающей среды в распространение устойчивости к противомикробным препаратам. Environ Health Prev Med. (2015) 20: 243–52. DOI: 10.1007 / s12199-015-0468-0

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

8. Патерсон DL. Влияние устойчивости к антибиотикам у грамотрицательных бактерий на эмпирическую и окончательную антибактериальную терапию. Clin Infect Dis. (2008) 47 (Дополнение 1): S14–20. DOI: 10.1086 / 5

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

9. Коупленд-Гальперин Л.Р., Каминский А.Дж., Блюфельд Н., Миралиакбари Р. Получение образцов для посева инфицированных ран: систематический обзор. J Уход за ранами. (2016) 25: S4–6, S8–10. DOI: 10.12968 / jowc.2016.25.Sup4.S4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

10. Михан Т.П., Файн М.Дж., Крумхольц Х.М., Сцинто Д.Д., Галуша Д.Х., Моккалис Дж. Т. и др.Качество помощи, процесс и результаты у пожилых пациентов с пневмонией. JAMA. (1997) 278: 2080–4. DOI: 10.1001 / jama.1997.03550230056037

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

13. Froment P, Marchandin H, Vande Perre P, Lamy B. Автоматические посевы образцов в сравнении с ручными в повседневной клинической микробиологии: оценка производительности полностью автоматизированного прибора InoqulA. J Clin Microbiol. (2014) 52: 796–802. DOI: 10.1128 / JCM.02341-13

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

15. Субраманьям Б., Сиварамакришнан Г., Дастхакер А., Кумар В. Фаговый лизин для контроля чрезмерного роста нормальной флоры в обработанных образцах мокроты для быстрого и чувствительного обнаружения Mycobacterium tuberculosis с помощью люциферазного репортерного фагового анализа. BMC Infect Dis. (2013) 13:44. DOI: 10.1186 / 1471-2334-13-44

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

16.O’Malley CA, VandenBranden SL, Zheng XT, Polito AM, McColley SA. Один день из жизни небулайзера: наблюдение за ростом бактерий в небулайзере у детей с муковисцидозом в условиях стационара. Respir Care. (2007) 52: 258–62.

PubMed Аннотация | Google Scholar

17. Sole ML, Poalillo FE, Byers JF, Ludy JE. Бактериальный рост в секрете и на аспирационном оборудовании у перорально интубированных пациентов: пилотное исследование. Am J Crit Care. (2002) 11: 141–9.

PubMed Аннотация | Google Scholar

18. Лентино-младший, Люкс Д.А. Невозможность посева мокроты при лечении инфекций нижних дыхательных путей. J Clin Microbiol. (1987) 25: 758–62.

PubMed Аннотация | Google Scholar

19. Брук И. Сбор и транспортировка образцов при анаэробных инфекциях. J Fam Pract. (1982) 15: 775–9.

PubMed Аннотация | Google Scholar

20. Мушер Д.М., Монтойя Р., Ванахита А.Диагностическая ценность микроскопического исследования мокроты и посевов мокроты, окрашенных по Граму, у больных бактериемической пневмококковой пневмонией. Clin Infect Dis. (2004) 39: 165–9. DOI: 10.1086 / 421497

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

21. Heineman HS, Chawla JK, Lopton WM. Дезинформация при посеве мокроты без микроскопического исследования. J Clin Microbiol. (1977) 6: 518–27.

PubMed Аннотация | Google Scholar

22.Стефков С., Каранфильская Н., Ковачева А. Важность продолжения микроскопического исследования мокроты на микобактерии туберкулеза для диагностики и лечения больных туберкулезом. God Zb Med Fak Skopje. (1968) 14: 225–9.

PubMed Аннотация | Google Scholar

23. Procop GW, Koneman EW. Атлас цветов Конемана и учебник по диагностической микробиологии 7-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Wolter Kluwer Health (2017).

Google Scholar

25. Хан М.С., Дар О, Тахсин С., Годфри-Фауссетт П.Оценка приемлемости респираторного образца для микроскопии КУБ: визуальный или микроскопический скрининг. Троп Мед Инт Здоровье . (2009) 14: 571–5. DOI: 10.1111 / j.1365-3156.2009.02260.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

26. Дерис З.З., Асма’Хассан С., Мохамед З., Хассан Х. Внедрение стандартных критериев отторжения мокроты для улучшения результатов результатов посева мокроты. Int Med J. (2008) 15: 287–90.

Google Scholar

27.Гарсия LS. Справочник по клиническим микробиологическим процедурам . 3-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: ASM Press (2010).

Google Scholar

28. Вонг Л.К., Барри А.Л., Хорган С.М. Сравнение шести различных критериев оценки приемлемости образцов мокроты. J Clin Microbiol. (1982) 16: 627–31.

PubMed Аннотация | Google Scholar

29. Hurwitz JL, Jones BG, Penkert RR, Gansebom S, Sun Y, Tang L, et al. Низкие уровни ретинол-связывающего белка и витамина d связаны с тяжелыми исходами у детей, госпитализированных с инфекцией нижних дыхательных путей и обнаружением респираторно-синцитиального вируса или метапневмовируса человека. J Pediatr. (2017) 187: 323–7. DOI: 10.1016 / j.jpeds.2017.04.061

CrossRef Полный текст | Google Scholar

30. Пегин М., Монфорте В., Мартин-Гомес М.Т., Руис-Кампс I, Берастеги С., Саез Б. и др. Эпидемиология инвазивного респираторного заболевания, вызванного появлением плесени, отличной от Aspergillus, у реципиентов трансплантата легких. Transpl Infect Dis. (2016) 18: 70–8. DOI: 10.1111 / tid.12492

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

32.Рана А., Шарма А., Пандей Г. Диагностическое значение окрашивания мокроты и посева мокроты при инфекциях нижних дыхательных путей в больнице третичного уровня. Int J Curr Microbiol Appl Sci. (2017) 6: 4310–4. DOI: 10.20546 / ijcmas.2017.607.448

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Исследование мокроты — обзор

Пневмония

Данные Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) показали, что пневмония является основной причиной смерти детей в возрасте до 5 лет и является причиной 16% смертей (рис.1.1). Заболеваемость и смертность особенно увеличиваются в тропиках, особенно в Южной Азии и странах Африки к югу от Сахары (рис. 1.2). В Танзании 85% детей с подозрением на пневмонию получают лечение; однако надлежащий уход зависит от дохода семьи, причем самые богатые семьи обращаются за помощью в 9,5 раза чаще. В Эфиопии только 30% детей с пневмонией получали лечение в учреждении или по месту жительства. 2 Данные ВОЗ показывают, что лишь 39% новорожденных находятся на грудном вскармливании, 60% детей с подозрением на пневмонию обращаются за помощью и 31% получают антибиотики.Плохая вакцинация, санитария и питание; многолюдные дома; загрязнение воздуха внутри помещений; а курение — все это отрицательно влияет на исход пневмонии в тропиках.

Общие патогены включают бактерии, вирусы и грибки. Наиболее частой бактериальной причиной пневмонии является Streptococcus pneumoniae , за которым следует Haemophilus influenzae типа b. Staphylococcus aureus Пневмония составляет от 2% до 10% острых внебольничных пневмоний.

Атипичные пневмонии, вызванные Mycoplasma pneumoniae, Chlamydia pneumoniae, Legionella spp., вирусы, грибки и паразиты. Респираторно-синцитиальный вирус (РСВ) является наиболее частой этиологией вирусной пневмонии. У ВИЧ-инфицированных младенцев грибковая пневмония, вызванная Pneumocystis jirovecii (ранее P. carinii ), составляет 25% всех случаев смерти от пневмонии. M. pneumoniae. инфекции происходят во всем мире, поражая в основном детей школьного возраста и молодых людей. Врач-тропический врач должен знать о не респираторных проявлениях микоплазменной инфекции, включая анемию, мирингит, синдром Стивенса – Джонсона, гепатит и неврит.

В период с 2002 по 2003 год коронавирус стал причиной более 8000 случаев тяжелого острого респираторного синдрома (ТОРС), который распространился через международные путешествия через континенты из своей страны происхождения в провинции Гуандун, Китай. После капельного вдыхания вируса наступал инкубационный период от 2 до 7 дней, затем повышалась температура, кашель, недомогание и головная боль. Воспаление легких характеризовалось десквамацией пневмоцитов, образованием гиалиновой мембраны и острым респираторным дистресс-синдромом (ОРДС).Восстановление могло быть медленным, и у некоторых пациентов развился фиброз. Смертность составляла от 10% до 20%, причем пожилые люди и люди с сердечно-сосудистыми заболеваниями подвергались особому риску.

В 2012 году в Саудовской Аравии появился еще один новый коронавирус — , ближневосточный респираторный синдром, коронавирус (БВРС-КоВ). В период с 2012 по 2017 год в ВОЗ было зарегистрировано 2040 лабораторно подтвержденных случаев заболевания, с небольшими вспышками за пределами Ближнего Востока. Передача произошла от человека к человеку, но требует тесного контакта и особенно часто наблюдается в медицинских учреждениях между пациентами или между пациентами и поставщиками медицинских услуг.Постулируется резервуар верблюда-верблюда. Первоначальными симптомами являются лихорадка, кашель и одышка, тяжесть заболевания варьируется от бессимптомных или легких симптомов простуды до ОРВИ. Тридцать пять процентов подтвержденных случаев умерли.

Вирусы гриппа с пандемическим потенциалом представляют собой риск глобального распространения болезни. 3 В Восточной Азии продолжаются вспышки птичьего гриппа (например, H5N1, H7N9 и H9N2), которые иногда распространяются на людей. В 2009–2010 годах вирус гриппа свиней (h2N1) из Мексики привел к глобальной пандемии.

Исследования и лечение

Исследование мокроты является важным помощником в диагностике пневмонии: цвет, количество, консистенция и запах. Слизисто-гнойная мокрота обычно обнаруживается при бактериальной пневмонии или бронхите. Скудная водянистая мокрота часто отмечается при атипичной пневмонии; «Ржавая» мокрота наблюдается при пневмококковой пневмонии; желе из смородины или темно-красная мокрота предполагает Klebsiella pneumoniae. Мокрота с неприятным запахом связана с анаэробными инфекциями, вызванными аспирацией, абсцессом легких и некротической пневмонией.Анализ крови обычно выявляет лейкоцитоз при бактериальной пневмонии, нормальное количество лейкоцитов или лейкопению при вирусной инфекции и эозинофилию при паразитарной инфекции. При возможности можно получить рентген грудной клетки, прокальцитонин в сыворотке и С-реактивный белок (рис. 1.3). Мазки из носоглотки для проведения полимеразной цепной реакции (ПЦР) могут помочь установить диагноз конкретных вирусных инфекций, если они доступны.

У детей рекомендуются Руководства по комплексному ведению детских болезней по лечению пневмонии (таблица 1.1). 4 Детская пневмония теперь подразделяется на два класса: тахипноэ и изображение грудной клетки указывают на лечение пероральными антибиотиками, тогда как тяжелая пневмония с опасными признаками (переохлаждение, потеря сознания, судороги) требует внутривенного лечения в больнице.

Стратегия ВОЗ по сокращению бремени пневмонии состоит из трех компонентов: защита путем поощрения грудного вскармливания и приема добавок витамина А; профилактика, используя вакцины против кори, H. influenzae, коклюша, ротавируса и S.pneumoniae и содействие мытью рук, санитарии, профилактике ВИЧ и профилактике котримоксазолом у ВИЧ-инфицированных пациентов; и лечение, обеспечение обращения за медицинской помощью, надлежащее ведение пациента и прием антибиотиков.

Тесты на инфекции легких | Michigan Medicine

Обзор темы

Другие тесты на легочные инфекции, такие как пневмония и острый бронхит, могут включать:

  • Анализы крови или посевы. Анализы крови могут помочь определить, присутствуют ли антитела к конкретному организму, который может вызвать пневмонию, или присутствуют определенные вирусы, такие как грипп (грипп) или респираторно-синцитиальный вирус (RSV).Врачи могут использовать посев крови для проверки наличия бактерий в кровотоке.
  • Оксиметрия. Оксиметр может определить количество кислорода в крови. Датчик в манжете или зажиме надевается на конец пальца. Этот датчик измеряет количество кислорода в крови. Оксиметр показывает результат.
  • Газы артериальной крови. Анализ газов артериальной крови позволяет измерить уровень кислорода в образце крови, взятой из вашей артерии.Врачи используют этот тест, чтобы определить, достаточно ли кислорода попадает в кровоток из легких.
  • Бронхоскопия. Бронхоскопия — это визуальный осмотр трубок, ведущих к вашим легким. Этот тест обычно проводит пульмонолог (специалист по легким). Он или она вводит вам через нос или рот небольшое устройство с подсветкой в ​​трубки, ведущие к вашим легким. Во время процедуры врач может взять образцы ткани, жидкости или слизи.
  • Транстрахеальный посев слизи (редко). Транстрахеальный посев мокроты — это анализ образца слизи, взятого непосредственно из дыхательного горла (трахеи).
  • Биопсия легкого. Биопсия легкого — это тест, проводимый на очень маленьком кусочке легочной ткани для выявления таких состояний, как рак легких или фиброзная ткань в легких (легочный фиброз). Ваш врач получает легочную ткань, вводя иглу в грудную клетку между двумя ребрами или с помощью бронхоскопии.
  • Торакоцентез. Торакоцентез включает прокол грудной стенки для получения жидкости из пространства вокруг легких. Жидкость, полученную во время теста, можно проверить на наличие признаков инфекции или рака.
  • Компьютерная томография (КТ). При компьютерной томографии используются рентгеновские лучи для получения подробных изображений структур внутри вашего тела. Его можно использовать у людей, которые не реагируют на их лечение.

Кредиты

Текущий по состоянию на: 26 октября 2020 г.

Автор: Healthwise Staff
Медицинский обзор:
E.Грегори Томпсон, врач-терапевт
Адам Хусни, доктор медицины, семейная медицина
Элизабет Т. Руссо, врач-терапевт

По состоянию на 26 октября 2020 г.

Автор: Здоровый персонал

Медицинский обзор: E. Грегори Томпсон, врач-терапевт и Адам Хусни, доктор медицины, семейная медицина и Элизабет Т. Руссо, врач-терапевт

RCPA — MCS мокрота

Окрашивание по Граму может использоваться для скрининга образцов мокроты перед посевом.Если преобладают клетки плоского эпителия, считается, что образец сильно загрязнен слюной, и культивирование не может быть выполнено, так как результат предсказуемо низкий и вводит в заблуждение. Если образец содержит мало эпителиальных клеток или не содержит их совсем, его культивируют, и регистрируют появление микроорганизмов на окрашивании по Граму.

Интерпретация посева требует корреляции с результатами окрашивания по Граму. Чтобы изолят считался значимым, он должен преобладать как при окрашивании по Граму, так и при культивировании, а также быть признанным респираторным патогеном.

Если Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae или Moraxella catarrhalis преобладают в культуре с устойчивым окрашиванием по Граму, они, вероятно, являются значительными патогенами в соответствующих клинических условиях (например, пневмония).

Грамотрицательные палочки (например, E. coli, Pseudomonas aeruginosa) часто колонизируют дыхательные пути, особенно у госпитализированных пациентов, получающих антибактериальную терапию.

Они редко бывают патогенными, но для интерпретации важности таких изолятов требуется клиническая оценка, особенно у тяжелых пациентов (например, Klebsiella pneumoniae может быть причиной некротической долевой пневмонии).

Выделение Staphylococcus aureus из мокроты обычно отражает колонизацию дыхательных путей, но при определенных обстоятельствах может быть патогенным (например, постгриппозная пневмония, респираторные ожоги, вторичная пневмония на фоне сепсиса).

Посев — более чувствительный метод, чем определение антигена, для диагностики пневмонии, вызванной Legionella spp. ПЦР-тестирование может быть доступно в некоторых лабораториях. Положительная культура на Legionella spp. Позволяет проводить серотипирование и дальнейшее определение подтипов организма, что может иметь важное значение для определения источника инфекции.Выделение Legionella spp на культуре указывает на наличие инфекции.

Инфекция, вызываемая Pneumocystis jiroveci , диагностируется путем обнаружения микроорганизмов с помощью окрашивания по Гимзе, серебру или толуидиновому синему либо с помощью DFA или ПЦР.

Рост Nocardia spp , B.

Leave a Comment

Ваш адрес email не будет опубликован.